Адрес: г.Киев, бульв. Академика Вернадского 36-В, оф. 1
Телефон: +38 (067) 249-22-01
Email: umdisstore@gmail.com; info.umdis@gmail.com
Главная Триходерма (Зеленая плесень). Методы борьбы с триходермой

Триходерма (Зеленая плесень). Методы борьбы с триходермой

Триходерма - это зеленная плесень, которую можно увидеть в грибной камере на компосте. Основной причиной развития триходермы в компосте является плохое качество этого компоста. Во-первых, это слишком высокое соотношение C к N в готовом компосте 2 фазы, 20 и более.

Technologies Молекулярные технологии очень важны в получении знаний о болезнях зеленой  плесени. В частности, они использовались: чтобы различить агрессивные и неагрессивные формы T. harzianum, которые морфологически подобны; для определения преобладающего типа зеленой плесени на коммерческих грибных фермах. В результате этих исследований был разработан клинический тест на быстрое определение агрессивного биотипа T. harzianum (Th2 в Европе и Th4 в Северной  америке). Анализ полиморфизма длины рестриктных фрагментов (RFLP) успешно использовался для разделения различных выделенных штаммов патогена на группы. В одном исследовании, 81 изоляты Trichoderma из грибного компоста, были изучены анализом RFLP рибосомальной ДНК и митохондриальной ДНК. Эти изоляты смогли отнести к 3-м основным группам. 

    
 
Дополнительная молекулярная технология, названная "случайный усиленный полиморфный анализ ДНК (RAPD)" подтвердила это разбиение на группы. Поскольку морфологические особенности изолятов могут очень сильно меняться от одного к другому и, потому что, их морфология зависит от изменения экологических условия, разновидностей Trichoderma и их взаимодействий теперь изучается молекулярными методами и компьютеризированным анализом. Например, для зеленой плесени, происходящей из различных континентов, было бы полезно знать взаимоотношение различных выделенных типов, так же как и происхождение различных биотипов. Для таких филогенетических исследований выполняется молекулярный анализ определенных областей их ДНК методами RFLP или RAPD.  Степень подобия  ДНК последовательностей штаммов коррелирует с их родственной близостью. У организмов, которые отдаленно связаны, есть подобие только в тех областях ДНК, которые не могут измениться, не оказывая вредное или, по крайней мере, существенное влияние на жизнеспособность. Близко родственные организмы показывают различия в областях ДНК, где изменчивость не оказывает значимого влияния. Так, в результате исследований последовательностей ДНК шести изолятов зеленых плесеней было показано, что они относятся к двум родственным группам. 
 
Группа I включала биотип Thl и агрессивные биотипы Th2 (Европа)  и Th4 (Северная Америка) 
 
Группа II включала биотип Th3  Филогенетическое дерево, полученное при использовании молекулярных данных, показало, что Thl является предком для агрессивных типов Th2 и Th4.46  Обширная научно-исследовательская работа по причинам возникновения, почвенным факторам, и контроле зеленых плесеней грибов была выполнена в Государственном Университете Пенсильвании на деньги Министерства Сельского Хозяйства Пенсильвании, используя услуги Грибного Исследовательского Центра Государственного Университета Пенсильвании. Результаты исследования были представлены в ряде статей.51,52,54  Вот некоторые из важных выводов из этих исследований: 
 
Показано, что именно биотип Th4 Trichoderma harzianum был причиной зеленых плесневых заболеваний  на грибных фермах Пенсильвании. Развит клинический тест, включающий  генетические методы "снятия отпечатков пальцев" ДНК для быстрого обнаружения биотипа Th4, что сделало возможным раннее обнаружение и контроль болезни. Доказано, что именно недавняя интродукция Th4 в культивируемые грибы была причиной эпидемии зеленых плесеней в Пенсильвании. Показано, что развертывание биологического регулирования численности вида Trichoderma на хлебных злаках не было причиной эпидемии зеленых плесеней. Продемонстрирована эффективность обработанного беномилом мицелия в борьбе с биотипом Th4 зеленой  плесени. Определено, что проявление болезни зеленых плесеней усиливают: внесение зернового мицелия, внесение азотистых питательных добавок при инокуляции, использование покровных материалов с высокой влажностью. Показано, что поражение компоста Фазы II зеленой плесенью значительно усиливается при низких концентрациях кислорода в газовой фазе во время компостирования Фазы II; и что биотип Th4 не может пережить грамотно проведенной пастеризации компоста Фазы II. Демонстрация того, что невозможно манипулировать температурой субстрат во время роста мицелия таким образом, чтобы дать преимущество для роста грибного мицелия Agaricus по сравнению с зеленой плесенью  Trichoderma. Показано, что инвазия зеленой плесени в компост при инокуляции мицелия приводит к большему ущербу, нежели при интродукции Trichoderma во время нанесения покровного материала.

Найдено,  что "Terraclo" является эффективным агентом, уничтожающим Trichoderma на  деревянных поверхностях и полах при 24°C. Показано, что другие компостные плесени могут изменять экспрессию зеленой плесени Trichoderma   c. Методы контроля Ранее представлена некоторая информация по контролю зеленой плесени, но теперь мы обращаем внимание на результаты некоторых исследований, посвященных именно контролю.

Первое исследование, которое будет обсуждаться, это работа Grogan и др., который использовал биотип Th2, самый агрессивный штамм T. harzianum в Великобритании. Th2 ответственен за серьезные падения урожайности A. bisporus. В исследовании сделано много наблюдений, которые достойны упоминания, даже при том, что некоторые из них были представлены ранее в сообщениях о болезни зеленой плесени в Северной Америке, где биотип Th4 является штаммом, ответственным за эпидемии.  Некоторые из их наблюдений и экспериментальных результатов включают следующее: Th2 колонизирует грибной компост во время ростамицелия мицелий A. bisporus иподавляет его созревание. В отсутствии злаковых зерен зеленая плесень в компосте не проявляется. Уже поздно спасать урожай, если есть видимые признаки роста зеленой плесени в субстрате.

 Все участки компоста, которые получили мицелий, инфицированный биотипом Th2, понесли падение урожайности вследствие развития зеленой плесени 
 При распылении споровой суспензии биотипа Th2 на инокулированный мицелием A. bisporus компост при концентрации 102 спор на кг компоста не было никакого сокращения урожая грибов, но при концентрации 105 спор на кг компоста было 90%-ое падение урожайности Были проведены дополнительные исследования по использованию фунгицидов для борьбы с зелеными плесенями.  В некоторых случаях фунгицидом обрабатывали мицелий, в других компост. Grogan и др.35 использовали фунгициды: карбендазим, триабендазол и беномил. Карбендазим дал наилучшие результаты при обработках мицелия. С карбендазимом урожайность грибов на инфицированном компосте составила 84 % по сравнению с 100 % контрольного (не инфицированного) компоста   и 38 % урожайностью контроля, инфицированного Trichoderma биотип Th2 компоста без фунгицидной обработки. Урожайность грибов при обработках триабендазолом составляла - 77 %, с беномилом - 58 %. Когда фунгицид вносили в компост, урожай грибов по сравнению с контролем составил 69 % с беномилом, 71 % с карбендазимом, и 44 % с триабендазолом. В этих экспериментах ни один из видов обработок фунгицидами не оказал существенного фототоксичного эффекта. Из этих исследований можно сделать обобщенные выводы: 
 1.              Гигиена на грибной ферме чрезвычайно важна. При неадекватной гигиене на ферме даже маленькое проявление зеленой плесени может превратиться в неконтролируемую эпидемию. 
 2.             Низкие уровни Trichoderma, биотипа Th2, не оказывали существенное влияние на грибной урожай. 
3.            Обработка мицелия фунгицидами была более эффективной, чем обработка компоста. Равные эффекты получали при дозах фунгицида 1,15 гр в пересчете на тонну компоста при обработке мицелия, и 70 гр на тонну компоста при прямом внесении его в компост во время инокуляции. 
4.             С точки зрения правительственного регулирования использования фунгицидов эти исследования показали, что остатки фунгицидов в грибах, выращенных при использовании названных концентраций фунгицидов, не превышали максимальный, разрешенный в Великобритании для карбендазима в грибах.  В Соединенных Штатах было получено разрешение от Государственного Департамента Сельского хозяйства Пенсильвании на использование "Benlate" (беномил) для борьбы с зеленой плесенью Trichoderma. Официально получено разрешение на приготовление смесей "Benlate" с гипсом, известью или мелом, и использование этих смесей для того, чтобы покрывать зерна мицелия до их использования в инокуляции компоста.

Важное обобщение о контроле зеленой плесени Trichoderma - если зерно мицелия защищено фунгицидом, таким образом защищая его от  зеленой плесени T. harzianum компоста, грибной мицелий будет расти энергично от зерна мицелия в компост. К сожалению, может быть неблагоприятный побочный эффект в том, что и Verticillium и Dactylium проявили привыкание к бензимидазольным фунгицидам, и таким образом эти сорные грибки, могут стать проблемой. Абсолютно необходимо сочетание жесткой гигиены с использованием фунгицидов с упором именно на гигиену. Хотя предшествующие работы по заболеваниям зеленой плесенью Trichoderma имели дело прежде всего с проблемами, связанными с производством грибов Agaricus, эта болезнь может быть проблемой в производстве других съедобных грибов. Первоначальные экспериментальные исследования в Грибном Исследовательском Центре в Государственном Университете Пенсильвании показали, что T. harzianum биотип Th4 уничтожил более 75 % урожая вешенки в (Pleurotus ostreatus) в двух изученных вспышках инфекции. Поскольку объемы промышленного производство гриба вешенки взлетели в прошлом десятилетии, у заболевания зелеными плесенями есть потенциал превращения в серьезную угрозу. Вешенка обычно культивируется на соломистом пастеризованном субстрате, помещенном в блоки/пакеты. Субстратные блоки помещают в инкубационные помещения с управляемыми параметрами: влажность, температура, и свет. Т.е. имеются прекрасные условия для проявления Trichoderma, особенно если на этой же самой ферме выращивается и A. bisporus. Поэтому, авторы исследования опять и опять подчеркивают жизненную необходимость программ гигиены. В статье, описывающей производство Pleurotus в Венгрии, Южной Африке и Соединенных Штатах, Germl и др.30 рассматривают общие проблемы вызванными вредителями, включая грибковые заболевания. Они указывают, что, хотя грибки, найденные в субстрате, редко является настоящими паразитами (чаще конкурентами), но есть множество разновидностей низших грибов, которые служат источником проблем.  Борьба с плесенями с использованием фунгицидов, например беномила, для обработки пастеризованных субстратов вообще-то эффективна в отношении конкурентных грибков. Эти конкуренты - большая проблема в случаях перегрева субстрата выше 35°C. Кроме того, повышенная температура субстрата может повредить грибной мицелий и уменьшить темпы роста мицелия, таким образом делая субстрат уязвимым для конкурентов, таких как: зеленая плесень Trichoderma spp.; Coprinus. 
 
Против триходермы хорошо себя зарекомендовал карбендазим и  Дерозал 500  г/л. Карбендазим применяют как по компосту так и по покровке:
нормы внесения по компосту 1 г на м2
по покровке до рыхления 2 г на м2                    
по по покровке между волнами 1 г на м2
Дерозал 500  г/л. Его также применяют как по компосту так и по покровке и между волнами, нормы внесения:
200 г на 100 л воды на 100 м2;                  
по покровке между волнами 1 г на м2.

    

Большое количество низших грибов легко прорастают в не полностью компостированных субстратах, в которых сохранился высокий уровень легкодоступных углеводов. Такое также часто случается на компостах, которые были не полностью пастеризованы. Наиболее часто приходится сталкиваться с Trichoderma, Aspergillus, и Penicillium,  которые иногда упоминаются под общим названием "зеленые плесени".

В ранних исследованиях сообщалось, что T. viride была наиболее частой разновидностью Trichoderma, которая захватывала компост и, впоследствии, ингибировала рост мицелия гриба. Hayes36 заявил, что это явление было связано с чрезмерной влажностью компоста его неадекватной пастеризацией, что приводило к неполному преобразованию питательных материалов, необходимых для роста грибов. Trichoderma koningii была а выявлена как патоген, поражающий те грядки Agaricus bisporus, на которых была инвазия почвы на оставшейся мертвой грибной ткани. Рост плесени на грядках пятнами диаметром более 15 - 20 сантиметров происходил буквально за 2 - 3 дня. Хотя зеленые плесени первоначально были обнаружены на фермах, работающих на компостах на основе соломы, шелухи риса, семян хлопчатника и т.п., дереворазрушающие грибы так же часто могут поражаться зеленой плесенью Trichoderma. Например, Kuehneromyces mutabilis, ныне известный как Pholiota mutabilis, выращивается в Германии начиная с конца Второй мировой войны и является популярным местным грибом. Этот гриб выращивают на древесине, и наилучшие результаты получали, прикапывая древесные обрубки, на которых гриб был привит и уже растет, на 2/3 их длины почву грядки. Несколько месяцев спустя мицелий развивается в почву, из которой он получает воду и питательные вещества. Почва грядки часто покрывается мицелиальными матами низших грибов, включая T. viride. Рост этих "сорных" грибков, не влияет на культивируемый гриб, но они могут ослабить рост гриба, используя субстрат. Техника выращивания дереворазрушающих грибов на прикопанных в почву обрубках применяется при культивировании Lentinula в ранние дни его культивирования и Dictyophora. Gramms32 сообщил, что древесина, покрытая почвой грядки, дала втрое больший урожай K. mutabilis, чем древесина, не вставленная в почву. Он предположил, что почвы грядки обеспечили мицелию гумус и полезные минералы, обеспечили более постоянную температуру и влажность, и поглощали ядовитые метаболиты мицелия. Очевидно, эти функции могут быть нарушены разросшейся Trichoderma.

Ospino-Giraldo и другие дали краткий обзор ранней истории зеленых плесеней, включая описание зеленой плесени, данной Sinden и Hauser в 1953. В прошлом проявления зеленых плесеней происходили только периодически, как правило, на фермах, использующих низкокачественный компост или применяющих неадекватные санитарные мероприятия. Таким образом, зеленая плесень не была серьезной проблемой, когда производители использовали хорошую гигиену, и надлежащую подготовку и пастеризацию компоста. В 1985, более серьезные вспышки зеленой плесени Trichoderma произошли в Ирландии, главным образом в брикетированном компосте. Болезнь была также обнаружена в Англии и Шотландии и сопровождалась 30 % падением урожайности. В Канаде и  Соединенных Штатов случались серьезные вспышки зеленой плесени, а в происшедших в 1994-1995 эпидемиях зеленой плесени Trichoderma  в Пенсильвании потери урожая привели к чрезмерным 20 миллионов $  убыткам. Болезни, вызываемые зеленой плесенью Trichoderma, превратились в главную проблему болезней в грибной промышленности. Обширные исследования были направлены на изучение самого патогена и мер по его контролю.
 
Исследования
Ниже описываются результаты исследований: роль мицелия в болезни; экспрессия зеленой плесени в компосте; использования молекулярных технологий в установлении идентичности штаммов Trichoderma вызывающих болезнь, и, наконец, меры, полезные в контроле болезни.
   
Роль мицелия 
О многих существенных результатах сообщил Fletcher22 в результате его исследований грибного мицелия и развития плесени  Trichoderma в компосте. Fletcher предпочитает использовать "плесень компоста Trichoderma" вместо "зеленая плесень", чтобы различить проблемы зеленой плесени в компосте и зеленой плесени, встречающейся в других местах, таких как (1) древесина поддонов, или (2) остатки грибов, оставленных покровных материалах, или (3) плесень, вызывающая пятна на шляпках буквах грибов.  Начальное исследование Fletcher было проведено для определения, может ли компост Фазы II служить средой для Trichoderma. Было найдено, что компост Фазы II не поддерживал рост T. harzianum, даже когда использовались высокие дозы инокулюма, но что незасеянный мицелием гриба компост Фазы II действительно содержал жизнеспособные клетки T. harzianum даже когда не было никаких видимых признаков роста мицелия T. harzianum или ее споруляции в компосте. Когда компост был инокулирован мицелием гриба, и впоследствии колонизирован Agaricus bisporus, население T. harzianum уменьшилось до не обнаруживаемых уровней. В отсутствии Agaricus, но при добавлении в компост автоклавированного зерна пшеницы, наблюдали увеличение населения Trichoderma. Таким образом, пришли к заключению, что зерновые зерна, вероятно, играют важную роль в развитии "плесени компоста Trichoderma". Открытие, которое привело к дальнейшим экспериментам со следующими результатами:
•действительно развивался в компосте, когда инокулюм был помещен на пищевую базу, такую как автоклавированное зерно пшеницы, но не при помещении в инертные материалы, такие как перлит или вермикулит.
•Когда мицелий и компост были инокулированы проросшими спорами проросшие споры были неспособны выдержать рост на компосте Фазы II вдали от зерен пшеницы. Однако было найдено, что маленькие части зерна были в состоянии поддержать рост на компосте Фазы II.
•Когда различные концентрации спор добавлялись к зерновому мицелию, развивалась лишь при максимальных концентрациях.
•Температурные исследования показали, что при 15°C, может колонизировать зерна прежде, чем сформировал защитный барьер, и также что будет расти при температуре, равной или выше, чем 30°C. И это при быстром уменьшении скорости роста мицелия при температуре выше 28°C, и гибели мицелия, происходящей, как сообщают, при 32°C, таким образом устраняя или уменьшая защитный барьер компоста Фазы II. Различные изоляты были протестированы на их способность ингибировать рост и было  обнаружено значительное отличие для разных изолятов.При исследовании было найдено, что обработка зернового мицелия 20-ppm раствором карбендазима, предотвращает развитие без отрицательных воздействий на рост Было проведено исследование чтобы определить, необходимо ли присутствие зерновок мицелия в компосте для развития в нем инфекции , потому что более ранние исследования показали, что в хорошем компосте плесень развивается только при внесении в него зерен злаковых культур.22Результаты экспериментов, выполненных Rinker и Alm49, показали, что внесение в компост как зерновок мицелия. так и автоклавированного зерна поддерживало развитие зеленых плесеней. Что приводило к решительному снижению урожайности грибов. Эти эксперименты были выполнены с биотипом  Th4,тогда как в  ранее упомянутых экспериментах Fletcher использовал биотип Th2. Заключение из исследования Rinker и Alm - (биотип Th4) не нуждается в злаковом зерне, чтобы начать развитие в компосте.  Эти исследования привели к дальнейшему уточнению роли зерновок мицелия для развития болезни зеленой плесени, вызываемой именно биотип Th4. Мицелий перед его использованием хранили в холодильнике в течение 12 месяцев. В некоторых экспериментах мицелий перед инокуляцией согревали до комнатной температуры, и в других инокуляцию проводили холодным мицелием. Результаты этого эксперимента: ни время хранения в холодильнике, ни период согревания его перед использованием не влияли ни на число колоний зеленой плесени ни на их размер. Не было обнаружено достоверного влияния этих факторов ни на уровень, ни на серьезность болезни зеленой плесени . Затем были проверено влияние типа зерна (рожь или просо), используемого для приготовления мицелия и дозы мицелия для инокуляции компоста. Результаты: не было никакого влияния на развитие болезни между мицелием ржи и мицелием проса, удвоение дозы мицелия по сравнению с нормой также не влияло на проявление болезни или степень поражения ею компоста.47  
Влияние обогащения компоста
Gandy сообщил, что после добавления сахара в грибной компост Фазы II, компост был быстро колонизирован Trichoderma. На Британских островах биотип Th2 T. harzianum был ответственен за большие потери урожая, тогда как в Северной Америке   за потери в урожае понесенными грибными производителями ответственен биотип  Th4. Итак, Rinker и Alm48 использовали биотип Th4 в их исследованиях эффекта влияние добавок к компосту на развитие инфекции Trichoderma на коммерческих грибных фермах. В своих исследованиях Rinker и Alm обогащали компост различными коммерческими добавками приложениями либо при инокуляции мицелием гриба, либо прежде перед нанесением покровного материала, и затем инокулировали его споровой суспензией с концентрацией  спор биотипа Th4 = 1 - 2 миллиардов. Суспензия спор вносилась пипеткой на дно отверстий на глубину 5 см ниже поверхности компоста в центре каждого поддона. Добавки, внесенные или при инокуляции или при нанесении покровного материала, увеличивали пораженные ростом зеленой плесени области - не продуктивные области. Было замечено, что инфицирование биотипом Th4 во время нанесения покровного материала было менее разрушительным для урожая, чем инфицирование при инокуляции. Из пяти проверенных специальных коммерческих добавок наименьшим стимулирующим действием на зеленые плесени обладала Campbell's S-41.  Компост, обогащенный S-41, увеличил грибной урожай, но S-41 содержал в составе ингибирующую плесени добавку - триабендазол. При дальнейшем добавлении беномила к S-41 было получено дополнительное уменьшение симптомов болезни на компосте.  С коммерческим добавками S-41 и Feather Meal, урожай грибов был значительно больше, чем в контроле - исходный компост без добавок и без заражения его биотипом Th4. Rinker и Alm заявляют, что необходимо точно определяться как с выбором коммерческой обогащающей добавки, так и со временем ее внесения. Эти факторы будут зависеть полного инфекционного давления на конкретной грибной ферме. Хотя использование обогащающих добавок может дать увеличение урожая, рост инфекции может привести к убыткам. 

TRICHODERMA VIRIDE  
Триходерма древесинная; Hypocrea rufa f. sterilis - Гипокрея рыжая ф. стерильная; H. rufa var. rufa - Г. рыжая вар. рыжий; H. rufa - Г. рыжая; H. contorta - Г. скрученная; Sphaeria contorta - Сферия скуреченная; S. rufa - С. рыжая; Pyrenium lignorum - Пирениум древесинный.Народные названия для данного вида отсутствуют.
МЕСТА ОБИТАНИЯ И ВРЕМЯ РОСТА в почве, воде, торфе, навозе, на растительных остатках, на гниющих растениях (в т.ч. на древесине и корнеплодах сахарной свеклы) и различных материалах, содержащих целлюлозу. В природе встречается в основном в конидиальной стадии, относящейся к формальному роду дейтеромицетов Trichoderma. В Подмосковье обнаружен на разной сырой древесине (ель, осина) - с конца сентября до ноября (Ю.Семенов). На Карельском перешейке (на юге) нами обнаружен на ольхе и осине - со второй по пятую пятидневку декабря, но старая колония сохранялась по февраль включительно. В городской черте Санкт-Петербурга (в лесопарках) найден в начале ноября и зимой. Колонии росли одиночно или небольшими группами. Все находки сделаны в течение двух аномально теплых зим. Колонии гриба с белой мицелилальной пленкой, с возрастом становятся волосистыми из-за образования скудных воздушных гиф. Конидиальные скопления (зоны конидиального спороношения колонии) изменяют размер от 2-5 мм до 1-3 см и более (сросшиеся пятна), в юности подушковидные, ватообразные - белые и беловатые, в зрелости превращаются в выпуклости и плесневидные скопления (Ю.Семенов) - зеленоватые, сине-, темно-голубовато-, изумрудно- и темно-зеленые с белым опушенным краем. Реверзум (обратная сторона колонии гриба при культивировании на твердой агаризованной среде) бесцветный. Мицелий образован гладкими, сильно ветвистыми, бесцветными гифами (нитями, образующими мицелий) диаметром 1,5-12 мкм. 
(отдельные короткие клетки гиф, возникающие для вегетативного размножения) диаметром до 14 мкм, интеркалярные, реже верхушечные, на коротких боковых веточках, шаровидные, реже - эллиптические, гладкие, бесцветные; обычно образуются в среде. Конидиеносцы (специальные ветви мицелия для бесполого размножения грибов) очень ветвистые, собраны в компактные или рыхлые подушечки, с боковыми веточками - одиночными или в группах по 2-3, которые увеличиваются в длине по мере удаления от вершины конидиеносца и несут более мелкие боковые веточки, супротивные или неправильно расположенные. Все веточки отходят под тупым углом.Стеригмы (маленькие шипообразные выросты базидии) образуют ложные мутовки, кроме верхушечной стеригмы и групп, состоящих более чем из 2-3 стеригм. Иногда они одиночные или супротивные, размером 8-14 на 2,4-3 мкм, равные по длине веточкам, прямые или слегка изогнутые, кеглевидные, суженные к основанию, расширяющиеся в средней части и вновь сужающиеся в довольно длинную шейку. Конидии (Споры бесполого размножения) диаметром 3,6-4,5 мкм или 4-4,8 на 3,5-4 мкм, шаровидные или коротко-яйцевые, слегка шероховатые и потому отчасти угловатые (А.Морозов).Мякоть тонкая (Ю.Семенов).ДвойникиГипокрея рыжая (Hypocrea rufa) - сумчатая стадия Триходермы. Ее красноватые, позднее красно-коричневые стромы развиваются на древесине и коре, реже на сухой траве. Имеют подушковидную форму и часто сливаются группами. В благоприятных условиях поднимаются над субстратом и иногда образуют короткую стерильную ножку и подушкообразную часть, в которую погружены перитеции (энциклопедия "Мир растений. Грибы").В качестве двойников Триходермы можно было бы рассматривать конидиальные стадии других гипокрейных грибов. Например, Гипокреи подушковидной (Hypocrea pulvinata) с желтоватыми или зеленоватыми подушковидными стромами, выросшими на некоторых живых и опавших, гниющих трутовиках, в т.ч. на Т. березовом (Piptoporus betulinus) и Т. окаймленном (Fomitopsis pinicola). Однако, его конидиальная стадия (типа кремониум) обнаружена лишь в культуре на питательных средах и принципиально отличается от Триходермы.
Триходерма - активный продуцент целлюлазы (фермента, расщепляющего целлюлозу) и используется для ее промышленного получения. Кроме того, из тканей этого гриба можно получить некоторые антибиотики (например, трихотецин) и средство защиты растений (овощных и зерновых культур) от грибных болезней - препарат триходермин (по принципу использования гиперпаразитов). Мицелий Триходермы разрушает ферменты клеточной стенки мицелия грибов-патогенов - Fusarium oxysporum (Фузариум оксиспорум), Phytophthora parasitica (Фитофтора паразитная), Rhizopus oryzae (Ризопус рисовый), Mucor plumbeus (Мукор свинцовый) и даже Armillaria mellea (Опенок осенний), Phaeolus schweinitzii (Трутовик Швейница) и Lentinus edodes (Шиитаке). При этом сам гриб тоже может стать источником заболевания, например, "зеленой плесенью ананаса" (Ю.Семенов).Колонии гриба растут быстро, достигая 9 см в диаметре за 4 дня при температуре +20 градусов и за 3,5 дня при темепаратуре +25 градусов.